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干货 | 6个月定制一剂药！从KJ的奇迹看基因编辑如何改写“罕见病无解”定律
2025-6-3 阅读(60)
2025年5月，《新英格兰医学杂志》披露个体化CRISPR基因编辑疗法重大突破：研究团队以“6个月极速响应"，为罹患罕见病——氨基甲酰磷酸合成酶1（CPS1）缺陷症的9.5个月大婴儿完成全流程定制化治疗开发。通过碱基编辑技术精准修复致病突变，患儿血氨水平、体重等关键指标显著改善，标志着人类在“单患者基因精准治疗"领域实现“从0到1"的历史性跨越。
罕见病患儿KJ刚出生就确诊氨基甲酰磷酸合成酶1（CPS1）缺陷症，因肝脏无法正常代谢氨，面临脑损伤甚至死亡风险，传统治疗需依赖排氮药物、严格低蛋白饮食及肝移植。研究团队借助碱基编辑技术，针对KJ来自父母双方的致病突变，仅用6个月完成全流程开发，从构建携带相同突变的小鼠模型与细胞系、跨物种（猴子）安全性验证，到定制化药物“k-abe"的生产。2024年2月，KJ接受两次静脉注射后，血氨浓度、谷氨酰胺水平等关键生化指标显著改善，体重从同龄婴儿第9百分位跃升至第26百分位，神经系统未受进一步损伤且展现正常活力。
这一疗法不仅突破了“单患者定制化基因治疗"的技术壁垒，更通过科研、产业与医疗系统的高效协同，为罕见病治疗开创了“精准定制"的全新范式。诺贝尔奖得主Jennifer Doudna盛赞其为“医学史里程碑"，标志着人类正式踏入“可治愈遗传性疑难杂症"的新时代。目前，研究团队正推动“平台试验"，旨在针对同类疾病的多个突变开发快速编辑方案，让个体化治疗从“个案"走向“可复制模式"。
图1.个体化CRISPR基因编辑疗法重大突破文献来源
在这场改写生命科学的竞速中，优质工具酶与核心原料是突破技术瓶颈的关键。翌圣生物可提供一系列高品质Cas蛋白及相关产品，助力研究人员更高效、更精准地完成基因编辑实验，推动基因治疗研究迈向新高度。以下为您精选明星产品矩阵，助您在基因编辑赛道上加速突破。
Cas9蛋白
Cas9 Nuclease (Cat#14701ES)
Cas9 Nuclease来源于野生型酿脓链球菌S. pyogenes，是依赖RNA介导的内切核酸酶，可以特异地切割双链DNA（在DNA PAM存在的情况下，也可以切割单链DNA或单链RNA）。Cas9切割位点位于目标序列内，离PAM（NGG）区3个碱基。本产品经过密码子优化及核定位信号（NLS）设计，由大肠杆菌重组表达而来，编辑效率高，可用于细胞（造血干细胞、T细胞等）的基因修饰，也可用于分子诊断，检测病原体等。
性能展示
A：体外切割测试：3批次体外切割活性均达98%以上。
B：体内基因敲除，敲除效率与进口品牌一致。
图2.Cas9 Nuclease体外切割活性及基因敲除效率结果
Cas12a蛋白
ArCas12a Nuclease (Cat#14702ES)
ArCas12a核酸内切酶，源自Agathobacter rectalis细菌的CRISPR系统，别名Cpf1，是一个包含1263个氨基酸的单体蛋白。Cas12a缺乏HNH结构域，可单独利用其RuvC结构域在CRISPR RNA（crRNA）引导下识别位于靶标核酸5’端富含胸腺嘧啶（T）的PAM区而启动对靶标DNA的切割，已成功用于许多哺乳动物和植物的基因组编辑。此外Cas12a还具有反式切割活性，可不加选择地切割反应体系中的非靶标单链DNA。与LbCas12a/AsCas12a相比，ArCas12a具有更高的温度适应性（25-55℃），可适用于基因组编辑及核酸检测等。
性能展示
双链DNA高效体外切割
图3.ArCas12a顺式切割活性检测 M：Marker；C：模板双链DNA
注：在crRNA的引导下可高效的切割双链DNA（600 bp）产生两段切割产物（200 bp+400 bp）
反式切割活性强，可用于核酸检测
图4.ArCas12a反式切割活性检测
注：以双链DNA模板为靶标，加入ArCas12a、crRNA（存在与模板DNA序列互补的spacer区）及单链DNA报告探针（含有荧光报告基团）进行体外切割，当ArCas12a与crRNA及靶标DNA形成复合体后会激活反式切割活性，切割单链DNA报告探针，从而发出荧光。结果显示，翌圣ArCas12a与crRNA及模板DNA形成复合体后具有反式切割活性，可剪切单链DNA。
Cas12b蛋白
AapCas12b Nuclease (Cat#14808ES)
AapCas12b核酸酶（又名C2c1）是由tracrRNA:crRNA（或sgRNA）介导的DNA核酸内切酶，来源于嗜酸耐热菌Alicyclobacillus acidophilus，在靶标双链DNA存在PAM（TTN）序列的情况下，特异地剪切靶标双链DNA，使DNA双链断裂并生成粘性末端。AapCas12b可不依赖PAM序列特异地剪切单链DNA靶标。双链或单链DNA靶标均能激活AapCas12b的反式剪切活性（即旁路剪切活性/附属剪切活性），即当AapCas12b酶与sgRNA、靶标DNA结合形成三元复合物后，便会被激活针对非特异序列ssDNA的反式剪切活性，将体系中的任意序列ssDNA切碎。AapCas12b最佳剪切反应温度为60℃，比AacCas12b更耐高温，适用于与LAMP联用，开发恒温扩增/CRISPR-Cas检测体系。
性能展示
顺势切割活性：效果媲美进口品牌T*
图5.AapCas12b Nuclease (10 μM)顺式切割活性验证
注：在20 μL的反应体系，含有带PMA序列的双链Target DNA、sgRNA、Cas12b和1×reaction buffer，在60°C下反应30 min，85°C下灭活5 min，在琼脂糖凝胶电泳测定结果显示，三批次AapCas12b Nuclease (10 μM) (Cat#14808ES)均能有效切割双链Target DNA,切割效果与进口品牌T*相当。
反式切割活性：能有效切割体系中的ssDNA
图6.AapCas12b Nuclease (10 μM)反式切割活性验证
注：在20 μL的反应体系，含有带PMA序列的双链Target DNA、sgRNA、Cas12b、Report ssDNA荧光探针和1×reaction buffer，在60℃反应1h，每30 sec采集一次荧光信号，结果显示在Target DNA、sgRNA、Cas12b共同存在的情况下，Report ssDNA荧光探针能被切割，从而释放荧光信号。
sgRNA合成试剂盒
Hifair® Precision sgRNA Synthesis Kit ( Cat#11355ES )
该试剂盒的应用极为简便，用户只需设计一条特定的上游引物，并结合试剂盒提供的其他试剂，即可在短短4小时内合成出20-100 μg高品质的sgRNA。所产生的sgRNA具备高产量、高纯度和高活性等优势，在基因编辑过程中能显著提升编辑效率，并大幅降低脱靶现象的发生几率，确保基因编辑工作以高效率和高准确性进行。
性能展示
高合成产量：单管反应4小时，sgRNA产量可达20-100 μg
图7.不同时间的sgRNA的合成量
适用范围广：不同种类的sgRNA均可获得高产量
图8.不同序列的sgRNA的合成产量
高纯度：合成的sgRNA条带单一
图9.合成的sgRNA的纯度（安捷伦2100测定）
高活性：合成的sgRNA可有效引导Cas9切割靶标DNA
图10.sgRNA的剪切效率效果图
当前，CRISPR基因编辑技术正处于快速发展的时期，整个领域仍在不断成熟和完善中。随着科学研究和技术应用的持续推进，我们有理由相信未来将涌现出更多创新性的基因编辑工具，这些新工具将进一步拓宽该技术的应用场景与潜力。
如果您对基因编辑有任何需求或兴趣，欢迎随时联系我们。无论是在基础研究、药物开发、农业生物技术、合成生物学等领域，我们都致力于为您提供前沿的技术支持和服务，共同探索基因编辑带来的无限可能。
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产品应用 | 产品定位 | 产品名称 | 产品货号 |
通用型 | 带NLS的SpCas9 | Cas9 Nuclease | 14701ES |
编辑效率媲美cas9 | OpenCRISPR-1 | 14703ES | |
荧光观察/流式分选 | 带EGFP荧光标签的SpCas9 | NLS-Cas9-EGFP Nuclease | 11364ES |
基因调控 | 无剪切酶活性的Cas9 | dCas9 Nuclease | 11351ES |
小分子量递送 | Cas12a | ArCas12a Nuclease | 14702ES |
Cas12b | AapCas12b Nuclease | 14808ES | |
sgRNA制备 | sgRNA合成 | Hifair® Precision sgRNA Synthesis Kit | 11355ES |
sgRNA纯化 | Hieff NGS® RNA Cleaner | 12602ES | |
编辑效率检测 | 编辑效率检测 | T7 Endonuclease I | 14548ES |
参考文献
[1] Musunuru K, Grandinette S A, Wang X, et al. Patient-Specific In Vivo Gene Editing to Treat a Rare Genetic Disease[J]. New England Journal of Medicine, 2025.
[2] Kretzschmar K, Watt F M. Lineage tracing[J]. Cell, 2012, 148(1): 33-45.
[3] Hsu Y C. Theory and practice of lineage tracing[J]. Stem Cells, 2015, 33(11): 3197-3204.
Chen C, Liao Y, Zhu M, et al. Dual-nuclease single-cell lineage tracing by Cas9 and Cas12a[J]. Cell Reports, 2025, 44(1).
